Статья

Сергей Валериевич Найденко, заместитель директора Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН (119071, Россия, Москва, Ленинский пр-т, д. 33); e-mail: snaidenko@mail.ru
Хосе Антонио Эрнандес-Бланко, старший научный сотрудник Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН (119071, Москва, Ленинский пр-т, д. 33); e-mail: j.a.hernandez.blanco@gmail.com
Мария Николаевна Ерофеева, старший научный сотрудник Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН (119071, Россия, Москва, Ленинский пр-т, д. 33); e-mail: erofeevamariya@yandex.ru
Михаил Нарциссович Литвинов, заместитель директора Заповедника Уссурийский – Филиала Федерального научного центра биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии ДВО РАН (692519, Россия, Уссурийск, ул. Некрасова, д. 1); e-mail: mnlitvinov@rambler.ru
Вячеслав Владимирович Рожнов, директор Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН (119071, Россия, Москва, Ленинский пр-т, д. 33); e-mail: rozhnov.v@gmail.com

Naidenko S.V., Hernandez-Blanco J.A., Erofeeva M.N., Litvinov M.N., Rozhnov V.V. 2019. Serum prevalence to non-viral pathogens in wild felids of Southern Primorye, Russia // Nature Conservation Research. Vol. 4(1). P. 99–105. https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2019.010

Серопозитивность к шести различным невирусным патогенам была оценена для двух крупных кошачьих юга Приморского края – амурского тигра (Panthera tigris altaica) и дальневосточного леопарда (Panthera pardus orientalis) (n = 26) в 2008–2016 гг. Образцы сывороток мелких кошачьих (евразийской рыси (Lynx lynx) и дальневосточного лесного кота (Prionailurus bengalensis euptilurus)) также были проанализированы на антитела к этим патогенам (n = 28) в этот же период времени. У кошачьих южного Приморья России выявили серопозитивность к пяти из шести проанализированных патогенов. Наиболее часто у кошачьих выявляли антитела к Candida sp. и Trichinella sp. (соответственно у 47% и 42% животных). Тогда как антитела к другим патогенам отмечали менее чем у 20% животных. Среди крупных кошачьих отмечали большую долю серопозитивных животных к этим патогенам, чем среди мелких кошек. Мы не выявили животных серопозитивных к Coxiella burnetii.

Panthera tigris altaica, Toxoplasma gondii, Trichinella, амурский тигр, патогены

Поступила: 22.11.2018. Исправлена: 05.02.2019. Принята к опубликованию: 10.02.2019

Arricau-Bouvery N., Rodolakis A. 2005. Is Q fever an emerging or re-emerging zoonosis? Veterinary Research 36(3): 327–349. DOI: 10.1051/vetres:2005010
Basso W., Edelhoffer R., Zenker W., Mostl K., Kubber-Heiss A., Prosl H. 2005. Toxoplasmosis in Pallas' cats (Otocolobus manul) raised in captivity. Parasitology 130(3): 293–299. DOI: 10.1017/S0031182004006584
Deem S.L., Karesh W.B., Weisman W. 2001. Putting theory into practice: wildlife health in conservation. Conservation Biology 15(5): 1224–1233. DOI: 10.1111/j.1523-1739.2001.00336.x
Edelmann A., Krüger M., Schmid J. 2005. Genetic relationship between human and animal isolates of Candida albicans. Journal of Clinical Microbiology 43(12): 6164–6166. DOI: 10.1128/JCM.43.12.6164-6166.2005
Goncharuk M., Kerley L., Naidenko S., Rozhnov V. 2012. Prevalence of seropositivity to pathogens in small carnivores in adjacent areas of Lazovskii Reserve. Biology Bulletin 39(8): 708–713. DOI: 10.1134/S1062359012080067
Goodrich J.M., Quigley K.S., Lewis J.C., Astafiev A.A., Slabi E.V., Miquelle D.G., Smirnov E.N., Kerley L.L, Armstrong D.L., Quigley H.B. 2012a. Serosurvey of free-ranging Amur tigers in the Russian Far East. Journal of Wildlife Diseases 48(1): 186–189. DOI: 10.7589/0090-3558-48.1.186
Goodrich J.M., Lewis J.C.M., Quigley K.S., Roelke M., Astafiev A.A., Slabii E.V., Miquelle D.G., Smirnov E.N., Kerley L.L., Armstrong D.L., Seryodkin I.V., Quigley H.B., Hornocker M.G. 2012b. Infection diseases of Amur tigers and Far Eastern leopards. In: I.V. Seryodkin, D.G. Miquelle (Eds.): Diseases and parasites of wildlife in Siberia and the Russian Far East. Vladivostok: Dalnauka. P. 19–26. [In Russian]
Gottstein B., Pozio E., Nockler K. 2009. Epidemiology, diagnosis, treatment, and control of Trichinellosis. Clinical Microbiological Reviews 22(1): 127–145. DOI: 10.1128/CMR.00026-08
Kerley L.L., Mukhacheva A.S., Matyukhina D.S., Salmanova E., Salkina G.P., Miquelle D.G. 2015. A comparison of food habits and prey preference of Amur tiger (Panthera tigris altaica) at three sites in the Russian Far East. Integrative Zoology 10(4): 354–364. DOI: 10.1111/1749-4877.12135
Ketz-Riley C.J., Ritchey J.W., Hoover J.P., Johnson C.M., Barrie M.T. 2003. Immunodeficiency associated with multiple concurrent infections in captive Pallas' cats (Otocolobus manul). Journal of Zoo Wildlife Medicine 34(3): 239–245. DOI: 10.1638/01-112
Kim H.J., Jeong W.S., Kim E.M., Yeo S.G., An D.J., Yoon H., Kim E.J., Park C.K. 2015. Prevalence of Trichinella spp. antibodies in wild boars (Sus scrofa) and domestic pigs in Korea. Veterinarni Medicina 60(4): 181–185. DOI: 10.17221/8105-VETMED
Kozar Z., Kozar M. 1965. A comparison of infectivity and pathogenicity of Trichinella spiralis strains from Poland and Kenya. Journal of Helminthology 39(1): 19–34. DOI: 10.1017/S0022149X00020058
Lucash B., Westerdahl H., Strandh M., Winkler H., Moodley Y., Knauer F., Hoi H. 2017. Genes of the major histocompatibility complex highlight interactions of the innate and adaptive immune system. PeerJ 5: e3679. DOI: 10.7717/peerj.3679
Luo S.J., Kim J.H., Johnson W.E., van der Walt J., Martenson J., Yuhki N., Miquelle D.G., Uphyrkina O., Goodrich J.M., Quigley H.B., Tilson R., Brady G., Martelli P., Subramaniam V., McDougal C., Hean S., Huang S.Q., Pan W., Karanth U.K., Sunquist M., Smith J.L.D., O'Brien S.J. 2004. Phylogeography and genetic ancestry of tigers (Panthera tigris). PLoS Biology 2: e442.
Murray D.L., Kapke C.A., Evermann J.F., Fuller T.K. 1999. Infectious disease and the conservation of free-ranging large carnivores. Animal Conservation 2(4): 241–254. DOI: 10.1017/S1367943099000578
Naidenko S.V. 2005. Traits of reproduction and postnatal development of Eurasian lynx. Moscow: KMK Scientific Press Ltd. 112 p. [In Russian]
Naidenko S.V., Ivanov E.A., Mordvintsev I.N., Platonov N.G., Ershov R.V., Rozhnov V.V. 2013. Seropositivity for different pathogens in polar bears (Ursus maritimus) from Barents Sea Islands. Biology Bulletin 40(9): 779–782. DOI: 10.1134/S1062359013090082
Naidenko S.V., Pavlova E.V., Kirilyuk V.E. 2014. Detection of seasonal weight loss and a serologic survey of potential pathogens in wild Pallas' cats (Felis [Otocolobus] manul) of the Daurian steppe, Russia. Journal of Wildlife Diseases 50(2): 188–194. DOI: 10.7589/2013-03-068
Naidenko S.V., Hernandez-Blanco J.A., Pavlova E.V., Erofeeva M.N., Sorokin P.A., Litvinov M.N., Kotlyar A.K., Sulikhan N.S., Rozhnov V.V. 2018a. Primary study of seroprevalence to virus pathogens in wild felids of South Primorie, Russia. Canadian Journal of Zoology 96(8): 839–846. DOI: 10.1139/cjz-2017-0192
Naidenko S.V., Hernandez-Blanco J.A., Seryodkin I.V., Miquelle D.G., Blidchenko E.Yu., Litvinov M.N., Kotlyar A.K., Litvinov M.N., Kotlyar A.K. 2018b. Serum prevalence of the bears in the Russian Far East to different pathogens. Zoologicheskii Zhurnal 97(9): 1189–1194. [In Russian]
Pas A., Dubey J.P. 2008. Fatal toxoplasmosis in sand cats (Felis margarita). Journal of Zoo and Wildlife Medicine 39(3): 362–369. DOI: 10.1638/2007-0149.1
Pavlova E.V., Kirilyuk V.E., Naidenko S.V. 2015. Patterns of seroprevalence of feline viruses among domestic cats (Felis catus) and Pallas' cats (Otocolobus manul) in Daursky Reserve, Russia. Canadian Journal of Zoology 93(11): 849–855. DOI: 10.1139/cjz-2015-0006
Pavlova E.V., Kirilyuk V.E., Naidenko S.V. 2016. Occurrence pattern of influenza A virus, Coxiella burnetii, Toxoplasma gondii, and Trichinella sp. in the Pallas cat and domestic cat and their potential prey under arid climate conditions. Arid Ecosystems 6(4): 277–283. DOI: 10.1134/S2079096116040089
Pikunov D.G., Korkishko V.G. 1992. Leopard of the Russian Far East. Moscow: Nauka. 191 p. [In Russian]
Penzhorn B., Stylianides E., van Vuuren M., Alexander K., Meltzer D.G.A., Mukarati N.L. 2002. Seroprevalence of Toxoplasma gondii in free-ranging lion and leopard populations in Southern Africa. African Journal of Wildlife Research 32(2): 163–165.
Quigley K.S., Evermann J.F., Leathers C.W., Armstrong D.L., Goodrich J., Duncan N.M., Miquelle D.G. 2010. Morbillivirus infection in a wild Siberian tiger in the Russian Far East. Journal of Wildlife Diseases 46(4): 1252–1256. DOI: 10.7589/0090-3558-46.4.1252
Roelke-Parker M.E., Munson L., Packer C., Kock R., Cleaveland S., Carpenter M., O'Brien S.J., Pospischil A., Hofmann-Lehmann R., Lutz H. 1996. A canine distemper virus epidemic in Serengeti lions (Panthera leo). Nature 379(6564): 441–445. DOI: 10.1038/379441a0
Rozhnov V.V., Hernandez-Blanko J.A., Lukarevskii V.S., Naidenko S.V., Sorokin P.A., Litvinov M.N., Kotlyar A.K., Pavlov D.S. 2013. Application of satellite collars to the study of home range and activity of the Amur tiger (Panthera tigris altaica). Biology Bulletin 38(8): 834–847. DOI: 10.1134/S1062359011080073
Sethi B., Butola K.S., Kumar Y., Mishra J.P. 2012. Multiple outbreaks of trichinellosis with high mortality rate. Tropical Doctor 42(4): 243. DOI: 10.1258/td.2012.110335
Simon A., Poulin M.G., Rousseau A.U., Dubey J.P., Ogden N.H. 2013. Spatiotemporal dynamic of Toxoplasma gondii infection in Canadian lynx (Lynx canadensis) in western Quebec, Canada. Journal of Wildlife Diseases 49(1): 39–48. DOI: 10.7589/2012-02-048
Sumithra T.G., Chaturvedi V.K., Susan C., Siju S., Rai A.K., Harish C., Sunita S. 2013. Mycoplasmosis in wildlife: a review. European Journal of Wildlife Research 59(6): 769–781. DOI: 10.1007/s10344-013-0769-9
Uphyrkina O., Johnson W.E., Quigley H., Miquelle D., Marker L., Bush M., O'Brien S.J. 2001. Phylogenetics, genome diversity and origin of modern leopard, Panthera pardus. Molecular Ecology 10(11): 2617–2633. DOI: 10.1046/j.0962-1083.2001.01350.x
Yudakov A.G., Nikolaev I.G. 2012. Winter ecology of the Amur tiger. Vladivostok: Dalnauka. 199 p.
Yudin V.G. 2015. Far Eastern Wildcat. Vladivostok: Dalnauka. 442 p. [In Russian]
Zaiman H., Hecht H.S., Howard R.G. 1960. Mortality of young male mice infected with 6,400 normal or irradiated Trichinella spiralis larvae. Experimental Parasitology 10(3): 284–286. DOI: 10.1016/0014-4894(60)90066-7
Zahedi M., Vellayan S., Jeffery J., Krishnasamy M. 1986. A case of double infection with Brugia pahangi and Dirofilaria immitis in a Malaysian clouded leopard, Neofilis nebulosi. Veterinarian Parasitology 21(2): 135–137. DOI: 10.1016/0304-4017(86)90154-8